技術服務信息
技術服務詳細描述
骨髓間充質干細胞BMSCs培養/誘導分化/
骨髓間充質干細胞(BMSCs)培養
實驗動物
4 周齡SD大鼠
主要試劑及儀器
DMEM/ F12培養基、胎牛血清和胰酶均購自美國Gibico 公司,CO2恒溫培養箱購自美國Thermo公司。
步驟
a. 取SD大鼠,頸椎脫臼法處死后立即用75%乙醇浸泡,移入超凈工作臺內,用大頭針固定大鼠四肢于工作臺面的泡沫板上。
b. ***酒擦拭四肢,再用酒精棉球擦拭,無菌條件下用滅菌消毒后的鑷子和剪刀分離出大鼠股骨和脛骨,剔除骨頭表面肌肉,PBS溶液沖洗兩遍。
c. 從中折斷骨頭,用2ml無菌注射器吸取PBS溶液沖出骨髓細胞多次,再用針頭吹打,吸管吸入離心管內,1000r/min離心5min,棄上清。
d. 用含10%胎牛血清及青鏈霉素的DMEM/F12 重懸細胞,接種于無菌培養瓶,置37℃、5%CO2恒溫培養箱中培養。
e. 24小時后棄去培養液,PBS沖洗 2~ 3次去除未貼壁細胞,加入培養液繼續培養。以后每2~ 3d換液1次,7~ 10d細胞生長融合,經0.25%胰酶消化,1~2傳代,其后一般3d傳代1次,選取生長良好的第三代細胞進行后續實驗。
鑒定
胰酶消化P3代細胞,PBS洗滌2次,分別加入PE標記CD29、CD34、CD45、CD90單克隆熒光抗體,并設同型對照,室溫避光孵育,應用流式細胞儀檢測BMSCs的表面標志。
細胞形態
BMSCs原代培養過程中,約24小時即可出現貼壁生長,細胞呈圓形、梭形、三角形生長緩慢。換液后細胞增殖明顯,出現以梭形為主的多種形態,10~14天70% ~80 %可融合達到傳代標準。傳代細胞形態單一,呈梭形或扁平型,增殖至細胞融合時呈漩渦狀和***狀排列。
骨髓間充質干細胞誘導分化
(1)收集細胞:在顯微鏡下觀察培養瓶貼壁面至70%-80%融合,在超凈工作臺上操作,先吸除培養瓶中舊培養基,用PBS洗2~3次,50mL培養瓶加入胰酶消化液約1-3mL,按此比例進行消化,晃動使消化液鋪均勻,置37度培養箱約2-5min,鏡下見細胞收縮變圓或少數脫落后,輕輕振動瓶底使細胞全部脫落,加入2-3mL完全培養基后,輕輕吹打,收集細胞至離心管,1 000 rpm離心5 min棄上清,加培養液,輕輕吹打成細胞懸液。
(2)細胞接種:將上述細胞懸液接種于無菌的6孔細胞培養板,加入2mL完全培養基,放入CO2培養箱 37℃培養 。
(3)細胞誘導:待細胞至50%-60%融合時,加入含50ug/lVEGF、10ug/lFGF、10%FBS的誘導培養液,放入CO2培養箱 37℃培養,連續誘導培養21d,每隔2天換液,每周傳代1次。
血管形成實驗
(1) 將Matrigel放于4℃融化(不能放于室溫,凝固之 后不可以再用)。滅菌的100μL槍頭,24孔板冷藏備用;
(2) 開始實驗時,從冰箱中取出冷藏的槍頭和24孔板,在24孔板每個孔中加入150μL Matrigel。加入膠時注意保持槍頭垂直于孔中間位置,Matrigel一直保持放在冰上;
(3) 加入膠后,將整個培養板放入培養箱中,放置30min使凝膠凝固;
(4) 取經不同濃度藥物A處理的不同代次的主動脈內皮細胞,消化后用無血清的培養基調整細胞濃度到2×105 cell/mL;
(5) 從培養箱中取出24孔板,每孔加入200μL細胞懸液;
(6) 蓋上蓋子后放入培養箱培養;
(7) 24h內記錄細胞變化。
人間充質干細胞hMSC成骨誘導
待細胞長至基本融合后,制備完成的成骨誘導培養液(基礎培養液+0.1μmol/L***+ 50μg/mL抗壞血酸+ 10 mmol/L β - 甘油***酸鈉),每隔一天換液一次,誘導21天后再進行礦化結節的茜素紅染色。
茜素紅染色:
1、誘導后細胞爬片用PBS漂洗2x2min;
2、4%多聚甲醛處理(室溫)20min;
3、PBS漂洗,3x2min;
4、茜素紅染液染30min;
5、雙蒸水沖洗2次;
6、干燥,封片。
3T3-L1脂肪細胞誘導分化成脂肪細胞
3T3-L1細胞融合至約70%時,用0.25%胰蛋白酶消化,傳代至6孔培養板中,待細胞接觸抑制2d后(誘導分化第0d) ,用經典***雞尾酒誘導方案誘導前脂肪細胞分化,加入分化誘導培養基1(0.5 mmol/L IBMX,1 μmol/L DEX、10ug/mL INS),72h后撤去IBMX和DEX,完全培養基中僅含有INS(誘導培養2),繼續培養3d后,僅含有10% FBS,2d換液1次,誘導分化8~10d。
注意事項:
1) 待細胞接觸抑制后2d加入誘導劑。太早,細胞沒有退出生長周期。太遲,細胞誘導后容易漂浮。
2) 3T3細胞株20代以后分化困難,最好挑選5代左右開始誘導分化。將細胞凍存起來,使用時再復蘇。
3) 大約需要8~10天,可以誘導分化成功。之后換液處理需要輕緩,以免損失細胞。
細胞細胞形態學觀察
倒置顯微鏡下觀察分化前3T3-L1前脂肪細胞呈梭形,胞漿內無脂滴,分化后3T3-L1前脂細胞呈圓形,胞漿內含有大量的脂滴。
威斯騰生物服務流程
威斯騰生物服務項目
分子生物學檢測 | 蛋白質與免疫學 | 動物實驗 |
實時熒光定量PCR | 單克隆抗體制備 | 帕金森疾病模型 |
免疫共沉淀(Co-IP) | 多克隆抗體制備 | 抑郁癥動物模型 |
ELISA(酶聯免疫吸附法)技術 | Western-blot 實驗服務 | 脊髓損傷模型 |
生化指標檢測 | 蛋白雙向電泳實驗服務 | 腦外損傷模型 |
雙熒光素酶報告基因檢測 | 原核蛋白表達純化 | 骨神經損傷模型 |
染色質免疫共沉淀(ChIP) | 真核蛋白表達純化 | 心肌缺血模型 |
GST pull Down | ITRAQ定量蛋白質組學 | 心力衰竭模型 |
SLAC蛋白組學 | 肺動脈高血壓動物模型 | |
高血壓模型 | ||
病毒包裝 | 實驗課題整體外包 | 粥樣動脈硬化模型 |
過表達/干擾慢病毒包裝純化 | 整體課題外包 | 大腦中動脈阻塞模型 |
過表達/干擾腺病毒包裝純化 | 細胞整體實驗外包 | 慢性之氣管炎模型 |
逆轉錄病毒包裝純化 | 動物整體實驗外包 | 過敏性哮喘模型 |
腺相關病毒包裝純化 | 肺炎大鼠模型 | |
肝炎-肝硬化-肝癌模型 | ||
蛋白芯片 | 原代細胞培養 | 肝纖維化模型 |
細胞因子芯片 | 骨髓間充質干細胞培養 | 膽結石模型 |
BioPlex懸浮芯片 | 脂肪干細胞培養 | 急性胰腺炎模型 |
生長因子芯片 | 心肌成纖維細胞培養 | 急性腎衰竭模型 |
炎癥因子芯片 | 軟骨細胞培養 | 體內血栓模型 |
血管生成因子芯片 | 血管內皮細胞培養 | 關節炎模型 |
凋亡因子芯片 | 神經元細胞培養 | I型和II型糖尿病模型 |
趨化因子芯片 | 內皮組細胞原代培養 | 裸鼠成瘤 |
HuProt TM 20K人類蛋白組芯片 | 基因編輯動物 | |
電生理相關服務 | 動物整體實驗服務 | |
膜片鉗實驗 | ||
細胞生物學檢測 | 高通量測序 | 代謝組學 |
細胞原代培養 | mRNA測序 | 氣相色譜GC/MS |
MTT檢測 | LncRNA測序 | 液相色譜LC/MS |
細胞凋亡檢測 | 全基因組測序 | 核磁共震NMR |
細胞周期檢測 | RNA-Seq測序 | |
細胞克隆形成實驗 | 外顯子測序 | 影像學相關實驗 |
Transwell細胞遷移/侵襲 | 16s擴增子測序 | Micro-CT |
流式分選 | Small RNA測序 | 小動物活體成像 |
CCK8/XTT檢測 | 宏基因組測序 | 核磁共振 |
臺盼藍檢測細胞活性 | 單細胞測序 | PET-CT |
藥物篩選細胞學實驗 | circleRNA測序 | |
細胞粘附性檢測 | 甲基化測序 | 基因編輯動物 |
細胞劃痕實驗 | 條件性敲除小鼠/大鼠 | |
細胞生物學整體實驗 | 全基因敲除小鼠/大鼠 | |
細胞成管實驗 | ||
病理檢測 | CRISPR/Cas9細胞敲除/敲入 | 基因芯片 |
掃描電鏡 | 基因定點突變細胞系 | LncRNA芯片 |
透射電鏡 | 單基因敲除細胞系 | miRNA芯片 |
HE染色 | 多基因敲除細胞系 | mRNA芯片 |
免疫組化 | 目的基因敲入細胞系 | 甲基化芯片(限人和小鼠來源樣本) |
Tunel(原位末端凋亡法)檢測 | 報告基因敲入細胞系 | SNP芯片(限人和小鼠來源樣本) |
激光共聚焦 | miRNA/LncRNA敲除細胞系 | |
免疫熒光 | ||
Masson染色 | CRISPR/Cas9動物敲除/敲入 | 科研設計指導&文章評估/潤色 |
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